Tumor Venéreo Transmisible (TVT)
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Fuente: Laboratorio Clínico Veterinario UCC
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GUÍA INTERACTIVA DE IMÁGENES DE LABORATORIO CLÍNICO VETERINARIO ENFOCADA EN ANIMALES DE COMPAÑÍA
El presente sitio web se realizó con el ánimo de ofrecer a estudiantes y profesionales una herramienta de información sobre agentes etiológicos y células, las cuales se observan en el día a día de un laboratorio de rutina. A continuación, se plantea un pequeño instructivo sobre su uso.
Al dar click en cualquier parte de la imagen se abrirá la ventana que contiene su descripción.
Al pulsar sobre textos subrayados se redirecciona a su definición.
Al dar click en el botón este abrirá la ventana correspondiente a información .
Los títulos nos dirigirán a los montajes y como realizar las tinciones.
Los textos subrayados nos dirigirán a una página para ampliar la información de la definición.
Para no realizar un scroll constante para desplazarse entre especies, se posee un acceso rápido, se debe pulsar en la especie que se desea investigar dentro de la página.
Al hacer click sobre el botón volver nos dirigiremos hacia la página principal del tema que estuviéramos observando.
Todas las páginas contendrán el botón de montajes en el cual observaremos los procesos realizados para el montaje de los diferentes exámenes.
Esta flecha ubicada en cada montaje nos permitirá dirigirnos directamente al botón volver.
GLOSARIO
El Buffy Coat es una técnica en la cual se deja sedimentar la sangre entera (En tubo con anticuagulante) para tomar la linea leucoplaquetaria y algunos glóbulos rojos y con ella hacer un extendido sanguíneo. Esta técnica es mayormente empleada en caninos. (Referencias)
Técnica de Woo
Esta técnica consiste en: tomar un capilar de microhematocrito, llenarlo de sangre con anticoagulante, para ser sometido al proceso de centrifugación y de esta manera evaluar la presencia de hemoparásitos móviles como Tripanosoma spp y filarias, entre la capa leucoplaquetaria y el plasma. (Referencias)
Es una modificación de la tinción de Wright, se caracteriza por ser rápida y tener los componentes (fijador, colorante eosinofílico y basófilo) en presentación separada. Con esta se tiñen de mejor manera las características celulares por lo que es ampliamente usada para las citologías. (Referencias)
El colorante usado en el laboratorio es el Hemacolor TM (Giemsa modificado), esta tinción se basa en la relación entre un colorante de Eosina y un Azur B dependiendo de la exposición en veces y tiempo de inmersión de la lamina será la intensidad de la coloración y su precipitación con el uso del buffer que este kit posee. (Referencias)
Es una tinción modificada a partir de la tinción de Romanosky, contiene rojo eosina y azul de metileno, por sus características le permite teñir tanto las partes ácidas como básicas de las células, lo que la hace una excelente tinción para teñir los gránulos de las células sanguíneas.(Referencias)
Esta técnica es la predilecta en los animales de compañía ya que la cantidad de material no contaminado es difícil de extraer, debido a que se realiza la extracción mediante sonda. Esta técnica consiste en tomar un poco de la muestra y disolverla en una gota de solución salina fisiológica y posteriormente poner una lamina cubreobjetos para observar al microscopio.
Esta técnica es un método cualitativo. (Referencias)
Coprológico por flotación
Esta técnica es un Sheather modificado en el cual se pesa un gramo de la materia fecal y se diluye con 20 ml de solución salina en un vaso de precipitado, posteriormente se pasa con ayuda del vaso a dos tubos de ensayo que se centrifugan para separar el sobrenadante que es descartado, se homogeneiza el sedimento y se le agrega la solución Sheather (Solución azucarada) hasta el limite del tubo de ensayo donde se ubica una laminilla cubreobjetos y esperamos 30 minutos a que suban los huevos y ooquistes. Es un método cuantitativo. (Referencias)
Técnica Mc Master
Esta es una técnica para el conteo de huevos y ooquistes consiste agregar 14 ml de solución azucarada, agregar 2 gramos de materia fecal, y agitar vigorosamente hasta diluir, agregar otros 14 ml y agitar, se toma un poco de la mezcla y se ubica en la cámara Mc Master mirando que no queden burbujas en sus dos divisiones, se esperan tres minutos y se realiza la lectura. Este es un método cuantitativo (Referencias)
Raspado profundo
Se debe tomar de la zona afectada mas reciente, se comprime con los dedos la zona afectada, se toma un cuchilla y se raspa en dirección al crecimiento del pelo, realizando la acción de raspar hasta que en el paciente se observe un punteado hemorrágico. Si se desea se puede humedecer la cuchilla con glicerina o aceite mineral pero cabe resaltar que después no se puede procesar la muestra recolectada con azul de lactofenol. (Referencias)
Raspado superficial
Se debe tomar de la zona afectada mas reciente, se depila la zona y se humedece con glicerina o aceite mineral esto ultimo para mejorar la recolección de ácaros y se raspa de manera suave sin dejar el punteado hemorrágico. (Referencias)
Tricograma
En esta técnica se extraen los pelos con sus raíces y puntas para posteriormente ser alineadas en una lamina portaobjetos, se le aplica una gota de glicerina. Esta técnica consiste en observar el estado de crecimiento de la raíz, además de observar la integridad de la cutícula del pelo y la presencia de ácaros o dermatofitos. (Referencias)
Hisopado auricular
Esta técnica consiste en tomar un hisopo y realizar un barrido del conducto auditivo externo, el hisopo junto con el material se ubica en un tubo con tapa de manera que no se contamine. la muestra se procesa tanto con azul como con tinción Gram para bacterias. (Referencias)
Es una tinción diferencial, Se basa en la unión del cristal violeta o violeta de genciana a los peptidoglicanos de la pared de algunas bacterias, posteriormente con el lugol se da una reacción que para el caso de las bacterias Gram positivas, resistirán la decoloración del alcohol acetona, para después las que se destiñeron se teñirán con la fucsina como las Gram negativas. (Referencias)
Impronta
Esta técnica consiste en tomar una lamina portaobjetos y apoyarla en la lesión o el área la cual se quiere examinar, para que las células desprendidas se adhieran a la lamina, y posteriormente realizar la tinción. (Referencias)